Normalwerte pocket

1;Vorwort zur 1. Auflage;4
2;Vorwort zur 5. Auflage;5
3;Inhalt ;6
4;1. Präanalytik;12
4.1;1.1. Einflussfaktoren;12
4.2;1.2. Wichtige Angaben für das Labor;13
4.3;1.3. Tageszeitliche Schwankungen;14
4.4;1.4. Messwerte mit hoher intraindividueller Schwankung;15
4.5;1.5. Standardisierte Blutabnahme;16
4.6;1.6. Beeinflussung durch Hämolyse, Lipämie und Hyperbilirubinämie;17
4.7;1.7. Einflüsse durch die Nahrung;18
4.8;1.8. Einflüsse durch Medikamente;19
4.9;1.9. Haltbarkeit von Proben barkeit;25
4.10;1.10. Präanalytik Urin;26
5;2. Einheiten, statistische Parameter ;27
5.1;2.1. Einheiten;27
5.2;2.2. Statistische Parameter;30
6;3. Klinische Chemie ;34
6.1;3.1. Abkürzungen (Substrate = S.);34
6.2;3.2. Klinisch-chemische Werte ch-;34
7;4. Hämatologie;60
7.1;4.1. Erythrozytenzahlen, Erythrozytenindizes (EDTA-Blut) A-;60
7.2;4.2. Leukozyten (Differenzialblutbild, EDTA-Blut) d,;61
7.3;4.3. Lymphozyten (Differen n Differenzialblutbild, EDTA-Blut);61
7.4;4.4. Knochenmark chenmark;62
7.5;4.5. Hämatologische Parameter;63
8;5. Gerinnung;67
9;6. Hormone;71
10;7. Tumormarker;84
11;8. Medikamente / Toxine;87
12;9. Körperflüssigkeiten ;94
12.1;9.1. Urin;94
12.2;9.2. Stuhl;101
12.3;9.3. Synovialflüssigkeit;103
12.4;9.4. Pleuraflüssigkeit;103
12.5;9.5. Bronchoalveoläre Lavage (BAL);104
12.6;9.6. Aszitespunktat ktat;105
12.7;9.7. Magensaft;106
12.8;9.8. Liquor;106
12.9;9.9. Ejakulat;109
12.10;9.10. Amnionflüssigkeit;110
12.11;9.11. Sonstige Flüssigkeiten;111
12.12;9.12. Speichel;113
13;10. Funktionstests;114
13.1;10.1. Renale Funktionstests;114
13.2;10.2. Gastrointestinale Funktionstests;116
14;11. Herz-Kreislauf;120
14.1;11.1. Elektrokardiogramm (EKG);120
14.2;11.2. Ultraschallkardiogramm (UKG);126
14.3;11.3. Hämodynamische Parameter ämodynamische;137
15;12. Lungenfunktion;143
15.1;12.1. Lungenvolumina, Atemfrequenz;143
15.2;12.2. Atemwegswiderstände/-leitfähigkeit/-compliance ompliance;147
15.3;12.3. Dynamische Ventilationsvolumina/-flüsse;148
15.4;12.4. Criteria for bronchodilator response;150
15.5;12.5. Kriterien für eine pathologische Provokationsreaktion;150
15.6;12.6. Gastransport;151
16;13. Ernährung;154
16.1;13.1. Energiebedarf;154
16.2;13.2. Nährstoffzusammensetzung verschiedener Nahrungsmittel;156
16.3;13.3. Wasserhaushalt;163
16.4;13.4. Lösungen;163
16.5;13.5. Elektrolyte;164
17;14. Wachstum;165
17.1;14.1. Körperoberfläche (KOF) äche;165
17.2;14.2. Gewicht;166
17.3;14.3. Körpergröße ße;171
17.4;14.4. Kopfumfang;175
18;15. Häufige klinische Klassifikationen nische;179
18.1;15.1. Karnofsky Index;179
18.2;15.2. NYHA-Stadien (New York Heart Association);180
18.3;15.3. Angina-Pectoris-Klassifikation gina-(Canadian Cardiovascular Society, CCS);180
18.4;15.4. Lown-Klassifikation;181
18.5;15.5. Fontaine-Ratschow-Klassifikation;181
18.6;15.6. Stadieneinteilung der zerebralen Ischämie dieneinteilung;182
18.7;15.7. Klassifikation Schädel-Hirn-Trauma (SHT);182
18.8;15.8. Glasgow Coma Scale ow;183
18.9;15.9. Klassifikation der Refluxkrankheit xkrankheit nach Savary und Miller;184
18.10;15.10.Forrest-Klassifikation;184
18.11;15.11. Child-Pugh-Kriterien;185
18.12;15.12. FAB-Klassifikation (French-American-British-Group) AB-;186
18.13;15.13. FAB-Klassifikation (French-American-British-Group) up);187
19;16. Abkürzungsverzeichnis;188
20;Literaturverzeichnis;190
21;Index;191

,801.5. Standardisierte Blutabnahme (S. 15-16) Blutabnahme zwischen 7 und 9 Uhr morgens am nüchternen Patienten in gleicher Körperposition (entweder immer liegend oder immer sitzend) nach 5 minütiger Ruhephase des Patienten. Stauung anlegen. Maximale Stauungszeit von 30s 0s möglichst nicht überschreiten, auf routinemäßiges Öffnen und Schließen der Faust ("Pumpen") bei visuell und palpatorisch erkennbaren Venen verzichten. Auf noch tastbaren Puls achten (Staudruck 50-100mmHg). Hg). Aufsuchen der Entnahmestelle. Bevorzugung in folgender Reihenfolge: Venen im Ellbeugen-, Unterarm-, Handrückenbereich. Nur in Ausnahmefällen V. femoralis. Visuelle und palpatorische Begutachtung. Hautdesinfektion (nach Desinfektion mit Spray oder damit getränktem Tupfer ca. 30s warten). Stich mit Kanüle üle nach Aufmerksammachen des Patienten in einem Winkel von 30° mit Schliffseite nach oben. Kanüle mit ausreichend großem Volumen verwenden. Lösen der Stauung nach erfolgreicher Blutaspiration. Blutröhrchen mit Antikoagulation nach Blutentnahme mehrmals kippen. Nativröhrchen vor Röhrchen mit Additiven insb. vor Gerinnungsröhrchen (um Kontamination des ersten Röhrchen mit paravasaler Gewebeflüssigkeit zu vermeiden). Entnahme aus bereits länger liegenden intravenösen Kathetern möglichst vermeiden (Verfälschung der Gerinnungswerte, Verdünnungseffekte). Nach Entnahme trockenen Tupfer auflegen, Kanüle rasch zurückziehen und Kompression des Tupfers auf Entnahmestelle möglichst durch den Patienten. Beugen des Armes vermeiden. 1.5.1. Fehlerquellen: -Hämolyse: durch zu lange Stauung, zu schnelle Aspiration, zu kleines Kanülenlumen, fehlende Vermischung mit Antikoagulans, zu starkes Schütteln, zu starkes Abkühlen oder Erwärmen, zu lange Aufbewahrung bis zur Analyse, unvollständige Zentrifugation -Falsch hohe Werte (insb. Kaliumerhöhungen): durch zu langes "Pumpen", zu lange Stauung (Hämokonzentration mit Erhöhung v.a. von Proteinen, Zellzahlen, Lipiden) -Gerinnung: durch zu langwierige Venenpunktion 1.6. Beeinflussung durch Hämolyse, Lipämie und Hyperbilirubinämie Durch Hämolyse, Lipämie und Hyperbilirubinämie werden einige Laborparameter in unterschiedlicher Ausprägung beeinflusst. Eine nichtartefizielle Hämolyse (z.B. bei hämolytischer Anämie) lässt sich an der Erniedrigung des Haptoglobins erkennen. Lipämien beim nüchternen Patienten sind nur bei ausgeprägten, meist angeborenen Hyperlipoprotein- / tryglyceridämien zu beobachten.